(一) 轉化細胞秋水仙素處理 取骨髓前3～4小時先給小白鼠經腹腔注入0. 1％的 

秋水仙素，注射劑量為4毫克／每公斤動物體重。 
(二) 取骨髓 經秋水仙素處理的小白鼠，可用損傷脊髓法處死，然后用剪刀剪開大腿上的皮膚和肌肉，取出大腿骨和脛骨，用一小塊紗布來回搓干凈附在骨上的肌肉碎渣。剪掉股骨兩端膨大的關節頭，然后將股骨剪碎投入小燒杯中，用2毫升1％檸檬酸鈉溶液攪爛碎骨，使骨髓細胞游離出來。靜止片刻，用吸管把懸浮液吸到離心管中，可重復沖洗一次。此時離心管中的細胞懸浮液可達 4～5毫升。 
(三) 低滲 將所獲得的轉化細胞懸浮液先進行平衡(注意：每次離心前都要平衡)，然后以 1000rpm離心10分鐘，吸去上清液，留0.2ml沉淀物，加0.075M KCL 溶液至8 毫升刻度，將細胞沉淀物吹散打勻，在水浴37℃ 低滲20～30分鐘。 
(四) 固定 低滲處理后的材料，以1000rpm離心10分鐘，吸去上清液，留0.2ml沉淀物，用吸管吹散沉淀物，沿管壁加固定液至6毫升, 沖勻后靜止固定20分鐘，即*次固定。按上述條件離心，去上清液，再次加入固定液至6ml，進行第二次固定。20分鐘后離心吸去上清液，留0.2ml沉淀物,再往沉淀物中滴加4滴固定液，沖勻制成細胞懸液。 
(五) 滴片 取事先在冰箱中預冷的載玻片(載玻片須經硫酸洗液浸泡10天以上，經清水沖洗，用蒸餾水浸泡)，滴2～3滴細胞懸液于粘有冰水的載玻片上，用嘴吹氣，使細胞迅速分散。將載片插放在切片架上晾干。 
(六) 染色 取2張制片平放在玻璃板上，用10：1 Giemsa染液染色20分鐘，流水沖洗后晾干即可鏡檢。 
(七) 轉化細胞觀察 用中倍鏡選擇分散適度，不重迭的染色體分裂相，轉高倍鏡詳細觀察小白鼠染色體的形態特征，并計算2n的染色體數目。